Научный журнал
Научное обозрение. Фундаментальные и прикладные исследования

СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА МИКРОФЛОРЫ ПРИ ХРОНИЧЕСКИХ ГНОЙНЫХ И ГНОЙНО-ПОЛИПОЗНЫХ РИНОСИНУСИТАХ

Эргешова А.М., Карагулова М.М., Исакова А.К., Токтоболот Кызы Ч.Т.
В статье представлен сравнительный анализ микрофлоры при хронических гнойных риносинуситах и с полипозным образованием согласно периодической литературы и на основании собственных исследований. Для этой цели проведены бактериологические исследования с идентификацией и подсчетом колоний. Использованы материалы, полученные от 107 амбулаторно и стационарно госпитализированных пациентов с хроническим гнойным и гнойно-полипозным риносинуситом в отделение оториноларингологии Национального госпиталя Министерства Здравоохранения Кыргызской Республики. При хроническом гнойном воспалении пазух, микрофлора представлена, как граммположительными так и граммотрицательными микрофлорами, анаэробами и грибковой микрофлорой. В содержимом из пазух при хроническом гнойном воспалении представлены: Staphylococcus aureus - 17%, L-форма Staphylococcus - 11%, Sreptococcus hemolyticus - 14%, Haemophillus influensae - 5%, Klebsiella oxytoca - 12%, Escherichia coli – 4%, Sreptococcus pneumonia et Proteus vulgaris – по 2%. Роста не обнаружено – 11%. Грибковой этиологии – 19%. При хроническом гнойном воспалении пазух с полипозным образованием микрофлора также разнообразная: Staphylococcus aureus – 73%, Staphylococcus epidermidis – 7%, streptococcus pyogenes – 7%, Streptococcus haemolyticus – 7%, Klebsiella pneumonia и streptococcus viridans – по 3%, что совпадают с данными литературы.
микрофлора
бактериологическое исследование
хроническое воспаление верхнечелюстной пазухи
хронический полипозный риносинусит
1. Попов И.Б., Щербаков Д.А., Тырык О.Б., Алексанян Т.А. Новый взгляд на лечение полипозного риносинусита // Вестник оториноларингологии. 2020. №3. С.48–51. https://doi.org/10.17116/otorino20208503148.
2. Рязанцев С.В. Будковая М.А. Современный взгляд на лечение хронического полипозного риносинусита // Российская ринология. 2017. №1. С 54-59.
3. Fairbanks D.N.F. Antimicrobial therapy in Otolaryngology-Head and Neck Surgery. 2007. 13th Edition.
4. Банников С.А., Миронов В.Г., Бойко Н.В. Грибковое поражение околоносовых пазух. Этиология, патогенез, классификация // Экспериментальная и клиническая оториноларингология. 2020. №1(02). С.32-36.
5. Туровский А.Б., Бондарева Г.П., Мусаев К.М. Роль золотистого стафилококка в течении полипозного синусита // Медицинский совет. 2021. №6. С.44–48. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2021-6-44-48.
6. Gendre A, Rives P, Michel G, Boutoille D, Espitalier F, Malard O. Intraoperative bacterial analysis in nasal polyposis: Clinical and functional impact. Eur Ann Otorhinolaryngol Head Neck Dis. 2019. vol.1363. P.155-160. doi: 10.1016/j.anorl.2019.02.013.
7. .Itzhak Brook, Edith H. Frazier. Bacteriology of chronic maxillary sinusitis associated with nasal polyposis J Med Microbiol. 2005.vol.54. Pt 6. P.595-597. doi: 10.1099/jmm.0.45767-0.
8. Кунельская В.Я., Шадрин Г.Б., Мачулин А.И. Эпидемиологические аспекты микоза лор-органов // Успехи медицинской микологии. 2015. № 14. С.143-145.
9. Fokkens WJ, Lund VJ, Hopkins C, Hellings PW, Kern R, Reitsma S, Toppila-Salmi S, Bernal-Sprekelsen M, Mullol J, Alobid I, Terezinha Anselmo-Lima W, Bachert C, European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyps 2020. Rhinology. 2020; vol.58.no.29. P.1-464. https://doi.org/10.4193/Rhin20.600.
10. Бойко Н.В., Банников С.А., Миронов В.Г. Видовой состав и родовая принадлежность грибов, выделенных из грибковых тел околоносовых пазух // Российская ринология. 2018. №3. С.37-40.
11. Jiang RS, Shih CH, Jiang YH, Hsieh HH, Chiang YF, Chuang HN, Hsiao TH. Nasal Mycology of Chronic Rhinosinusitis Revealed by Nanopore Sequencing. Diagnostics (Basel). 2022. vol.12. no.11. P.2735. doi: 10.3390/diagnostics12112735.
12. Эргешова А.М., Карагулова М.М., Ли Г.В., Касымбекова С.К. Видовой состав микрофлоры у больных с хроническим полипозным риносинуситом, проживающих в Кыргызской Республике // Здравоохранение Кыргызстана. 2022. №4. С.106-111. https://dx.doi.org/10.51350/zdravkg2022.4.10.15.106.
13. Лопатин А.С., Азизов И.С., Козлов Р.С. Микробиом полости носа и околоносовых пазух в норме и при патологии. Часть I. // Российская ринология. 2021. №1: С.23 30. https://doi.org/10.17116/rosrino20212901123.

Введение: Роль инфекции в этиологии и патогенезе хронического гнойного и гнойно-полипозного риносинусита значима. Поэтому эти нозологии постоянно находятся в центре внимания у ринологов. Этому способствует, с одной стороны совершенствование уровня бактериологической диагностики, а с другой, с устойчивостью микрофлор. [1,2]. Появление устойчивых форм микроорганизмов способствуют появлению воспалительного процесса в полости носа и в околоносовых синусах и непременно способствуют его развитию.

В данном сообщении, мы на основании собственных исследований и данных периодической литературы, сочли целесообразным дать сравнительный анализ микрофлоры в полости носа и верхнечелюстной пазухи при хроническом гнойном и гнойно-полипозном воспалении.

Результаты бактериологических исследований экссудата при хроническом воспалении отличаются от гнойно-полипозного воспаления. По данным D.N.F. Fairbanks (2016) [3], при хроническом синусите в содержимом из пазух обнаруживаются: Staphylococcus aureus выделяется у 4% больных, нередко грамотрицательные стафилококки, Streptococcus hemolyticus - 6%, Streptococcus pyogenes (B hemolyticus) - 3%, Streptococcus pneumoniae - 2%, Haemophillus spp. – 4%, Moraxella cаtarrhalis - у 4%, Peptostreptococcus spp. - 22%, Prevetella spp. - у 15%, Bacteroides spp. - у 8%, Propionibacterium spp. – у 7%, Fusobacterium spp. - у 5% больных. При хроническом процессе более разнообразной является грибковая флора. Наряду с представителями рода Candida обнаруживаются и представители родов Aspergillus и Penicillinus [4].

При хронических гнойно-полипозных риносинуситах пейзаж микроорганизмов тоже разнообразен. Ведущее значение среди бактериальных инфекций придают Staphylococcus aureus [5,6,7].

При хроническом гнойном, так и гнойно-полипозном процессе в пазухах одинаково часто высеивались грибки рода Candida (24,3%- 24,6%). Это дает основание считать, что грибковой инфекции, следует уделять серьезное внимание в поражениях параназальных синусов, поскольку в отдельных случаях оно сопровождается серьезными изменениями в костных структурах параназальных синусов и даже развитием внутриглазничных осложнений и тромбозов кавернозного синуса [8]. По последним данным Европейской академии аллергологии и клинической иммунологии (European Academy Allergology and Clinical Immunologe — EAACI Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyps — EPOS, 2012-2020), распространенность полипозных риносинуситов варьируются от 1 до 4% и в последнее время установлено, что грибковая флора, вегетирующая в полости носа и в пазухах может быть причиной развития аллергического риносинусита [9]. Также, согласно по некоторым данным при грибковых поражениях на рентгенологическом и томографическом исследовании параназальных синусов иногда вызывает необычную картину. Например, структура от известковой до металлической плотности. Описавший ее H.Stammberger (1985) эти изменения считает, что постепенный рост мицелия ведет к образованию структур и грибковых масс. Их генез он объясняет отложением фосфата и сульфата кальция, которые ассимилируются из секрета слизистой оболочки. В центре таких отложений определяются признаки некроза и лизиса [10]. Согласно по литературным данным, длительное и упорно рецидивирующее течение риносинуситов в 12,4% наблюдений связано с микотическим поражением параназальных синусов. При этом наиболее часто в воспалительный процесс такого генеза вовлекается верхнечелюстная пазуха. В других исследованиях обращают внимание на то, что в таких пазухах преобладают грибы рода Candida, Aspergillus и Penicillinum [11].

Цель исследования – провести сравнительный анализ микробиологических исследований у больных с хроническим гнойным риносинуситом и с полипозным образованием в полости носа на основании литературы и собственных исследований.

Материалы и методы исследования. К бактериологическому исследованию с идентификацией и подсчетом колоний использовались материалы, полученные от 107 стационарно и амбулаторно наблюдавшихся пациентов с хроническим воспалением верхнечелюстной пазухи и с полипозным образованием, в отделении оториноларингологии-хирургии головы и шеи Национального госпиталя Министерство Здравоохранения Кыргызской Республики. В данной группе 77 пациентов были с хроническим гнойным воспалением верхнечелюстной пазухи, в возрасте от 18 до 60 лет, из которых мужчин - 45 (58,4%), женщин - 32 (41,2%). У 38 пациентов полученный экссудат издавал неприятный запах, у 39 пациентов имел крошковидный вид. Во всех случаях он содержал примесь слизи. Подавляющее большинство этих больных беспокоило слабость и боль в области пораженной пазухи, а также головная боль. Вместе с этим, 30 пациентов с хроническим гнойно-полипозном риносинуситом в возрасте от 20 до 65 лет, из которых: мужчин – 17 (56,6%), женщин – 13 (43,4%). У всех пациентов с хроническим гнойно-полипозным воспалением параназальных синусов в просвете полости носа имелся гнойный экссудат и полипозное образование.

Особое внимание уделялось забору материала для бактериологического исследования. Микрофлоры, полученные из полости носа и околоносовых пазух, идентифицировали и выделяли в виде отдельных культур для дальнейшего исследования по методическим основам, изложенным в приказе Министерства Здравоохранения Кыргызской Республики №4 от 11.01.2010 г. «Об утверждении методических указаний по бактериологическим методам лабораторных исследований клинического материала (с изменениями от 18.11.2016 г.)». Для выделения микроорганизмов полученный материал засевали в сахарный и питательный бульоны. Их инкубировали в термостате при Т +37ºС в течение 24-48 часов. На первичные субкультуры производили на 5% кровяной и мясопептонный агары для выращивания и определения количества колонизации бактерий. С той же целью использовали среду Эндо для выращивания Enterobacteriaceae и Pseudomonas aeruginosa – агар цитрамида. После выявления микрофлор колоний, производили их идентификацию и определяли чувствительность к лекарственным препаратам. После выделения чистой культуры бактерий и грибков, наносили исследуемый штамм на соответствующие среды: обнаружение других элементов грибковой микрофлоры выделяли в нативном материале методом микроскопии «раздавленной капли». Для определения актиномицетов ее окрашивали по Романовскому-Гимзе и затем микроскопировали. Вторым этапом микологического исследования являлась культуральная диагностика, для чего полученный материал засевали на плотную питательную среду Сабуро и культивировали посевы в термостате при температуре 30ºС, а затем укладывали изготовленные диски в определенном порядке. Через 24-36 часов определяли наличие роста микробиомы или его отсутствие вокруг каждого диска. Зону подавления роста микрофлор вокруг каждого диска измеряли в милиметрах и сравнивали со стандартными значениями, индивидуальными для каждого микроорганизма и для антибактериального и противогрибкового препарата. Полученные результаты микробиологических исследований оценивались по категориям: Н, Ч, В (нечувствительные, чувствительные, высокочувствительные).

Результаты исследований и их обсуждение. Выполняя представленную работу прежде всего, мы сочли необходимым изучить колонизацию различных представителей микрофлор, полученных из экссудата полости носа и верхнечелюстной пазухи при названной патологии у жителей Кыргызской Республики, особенность которой следует учесть. Полученные результаты микробиологических исследований позволили нам дать характеристику возбудителей, имеющих этиопатогенетическую роль в возникновении и течении хронического гнойного и гнойно-полипозного воспаления верхнечелюстных пазух. В зависимости от экологических условий окружающей среды и достижений современной фармации, такие данные со временем меняются. Вышеперечисленные факторы отражаются на видовой состав микрофлоры и на ее чувствительности к лекарственным препаратам [12,13].

В содержимом из пазух при хроническом гнойном воспалении обнаруживались: Staphylococcus aureus - 17% и его устойчивая L-форма Staphylococcus - 11% в пределах с колонизацией менее от 102 до 107 КОЕ/мл, Streptосoccus hemolyticus - 14% от 102 до 104 КОЕ/мл, Streptococcus pneumoniae - 2% от 102 до 104 КОЕ/мл, Haemophillus influensae - 5% от 102 до 104 КОЕ/мл , Klebciella oxytoca - 12%, Escherichia coli - 4% от 102 до 104 КОЕ/мл, Proteus vulgaris - 2% от 106 до 108 КОЕ/мл и другие микрофлоры - 3%. Роста не обнаружена - 11%.

Грибковой этиологии - 19%, из них рода Candida - у 13%, представители родов Aspergillius у 4% и Penicillinus - у 2% (диаграмма 1).

Проведенные исследования дали возможность выделить и идентифицировать 33 штаммов у 30 пациентов с хроническим гнойно - полипозным риносинуситом, которые имели бактериальную природу. Бактериальная микрофлора у каждой из обследованных групп больных имела отличие в представительстве микроорганизмов.

 
 

Диаграмма 1. Частота регистрации видовой характеристики микрофлоры, 77 – больных с хроническим гнойным риносинуситом, в графическом изображении

 

Диаграмма 2. Частота регистрации видовой характеристики микрофлоры, 30-больных с хроническим гнойно- полипозным риносинуситом, в графическом изображении

При хроническом гнойно-полипозном риносинусите преобладал Staphylococcus aureus в пределах с частотой менее 102 до 107 КОЕ/мл - у 22 пациентов, Staphylococcus epidermidis от 103 до 106 КОЕ/мл - у 2, Streptococcus viridans до 102 КОЕ/мл - у 1, Streptococcus pyogenes от 102 до 104 КОЕ/мл - у 2, Streptococcus haemolyticus от 102 до 104 КОЕ/мл - у 2, Klebsiella pneumoniae до 103 КОЕ/мл - у 1 (диаграмма 2).

Учитывая отмеченное, что отсутствие данных об анаэробной инфекции в наших исследованиях объяснимо отсутствием технических возможностей, позволяющих выделять этих представителей микромира, число, так называемых стерильных гнойных экссудатов из параназальных синусов, практически исчезло после внедрения в практику современных бактериологических методик, позволяющих обнаружить и идентифицировать неклостридиальных анаэробов.

Выводы:

1. Микрофлора, высеянная из полости носа и верхнечелюстных пазух при гнойном воспалении околоносовых пазух и гнойно-полипозном риносинусите представлена аэробами, анаэробами и грибками, что соответствует данным литературных источников.

2. Проведенные исследования подтвердили высокую частоту патогенных бактерий в полости носа при полипозном риносинусите золотистым стафилококком, а также грамотрицательных бактерий, что подтверждает их участие в воспалительных реакциях, лежащих в основе возникновения и прогрессирования полипоза носа.

3. Состав, распределение и численность микрофлоры влияют на состояние слизистой оболочки полости носа, а также на рост и функцию патогенов.


Библиографическая ссылка

Эргешова А.М., Карагулова М.М., Исакова А.К., Токтоболот Кызы Ч.Т. СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА МИКРОФЛОРЫ ПРИ ХРОНИЧЕСКИХ ГНОЙНЫХ И ГНОЙНО-ПОЛИПОЗНЫХ РИНОСИНУСИТАХ // Научное обозрение. Фундаментальные и прикладные исследования. – 2023. – № 3. ;
URL: https://scientificreview.ru/ru/article/view?id=110 (дата обращения: 07.12.2024).

Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»
(Высокий импакт-фактор РИНЦ, тематика журналов охватывает все научные направления)

«Фундаментальные исследования» список ВАК ИФ РИНЦ = 1,674